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PCR反應(yīng)擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)狀況分析
PCR產(chǎn)物是否為特異性擴(kuò)增 ,其結(jié)果是否準(zhǔn)確可靠,必須對其進(jìn)行嚴(yán)格的分析與鑒定,才能得出正確的結(jié)論。PCR產(chǎn)物的分析,可依據(jù)研究對象和目的不同而采用不同的分析方法。下面就擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)的狀況分析:
1、擴(kuò)增產(chǎn)物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散
(1)酶量過高。減少酶量;酶的質(zhì)量差,調(diào)換另一來源的酶。
(2)dNTP濃度過高。減少dNTP的濃度。
(3)MgCl2濃度過高。可適當(dāng)降低其用量。
(4)模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng,而基因組DNA則應(yīng)<200ng。
(5)引物濃度不夠優(yōu)化。對引物進(jìn)行梯度稀釋重復(fù)PCR反應(yīng)。
(6)循環(huán)次數(shù)過多;增加模板量減少循環(huán)次數(shù)至30,縮短退火時(shí)間及延伸時(shí)間,或改用二種溫度的PCR循環(huán)。
(7)退火溫度過低。
(8)電泳體系有問題:
①凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大;
②凝膠沒有凝固好;
③瓊脂糖質(zhì)量差。
(9)若為PCR試劑盒則可能:
①由于運(yùn)輸儲存不當(dāng)引起試劑盒失效;
②試劑盒本身質(zhì)量有問題,如引物選擇、循環(huán)參數(shù)等選擇不當(dāng)。
(10)降解的陳舊模板擴(kuò)增也易產(chǎn)生涂布。
2、. 擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)多條帶(雜帶)
(1)引物用量偏大,引物的特異性不高。應(yīng)調(diào)換引物或降低引物的使用量。
(2)循環(huán)的次數(shù)過多。適當(dāng)增加模板的量,減少循環(huán)次數(shù)。
(3)酶的用量偏高或酶的質(zhì)量不好,應(yīng)降低酶量或調(diào)換另一來源的酶。
(4)退火溫度偏低,退火及延伸時(shí)間偏長。應(yīng)提高退火溫度,減少變性與延伸時(shí)間,也可采用二種溫度的PCR擴(kuò)增。以2度為梯度設(shè)計(jì)梯度PCR反應(yīng)優(yōu)化退火溫度。
(5)樣品處理不當(dāng)。
(6)Mg2+濃度偏高,因適當(dāng)調(diào)整Mg2+使用濃度。
(7)若為PCR試劑盒,也可能時(shí)試劑盒本身質(zhì)量有問題。
(8)復(fù)制提前終止。使用非熱啟動(dòng)的聚合酶時(shí)常有發(fā)生。冰上準(zhǔn)備反應(yīng)體系或采用熱啟動(dòng)聚合酶。
(9)反應(yīng)緩沖液未完全融化或未充分混勻。確保反應(yīng)緩沖液融化完全并徹底混勻。
(10)引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設(shè)計(jì)引物。
(11)引物量過多。減少反應(yīng)體系中引物的用量。
(12)模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng,而基因組DNA則應(yīng)<200ng。
(13)外源DNA污染。確保操作的潔凈。
1、擴(kuò)增產(chǎn)物在凝膠中涂布或成片狀條帶彌散
(1)酶量過高。減少酶量;酶的質(zhì)量差,調(diào)換另一來源的酶。
(2)dNTP濃度過高。減少dNTP的濃度。
(3)MgCl2濃度過高。可適當(dāng)降低其用量。
(4)模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng,而基因組DNA則應(yīng)<200ng。
(5)引物濃度不夠優(yōu)化。對引物進(jìn)行梯度稀釋重復(fù)PCR反應(yīng)。
(6)循環(huán)次數(shù)過多;增加模板量減少循環(huán)次數(shù)至30,縮短退火時(shí)間及延伸時(shí)間,或改用二種溫度的PCR循環(huán)。
(7)退火溫度過低。
(8)電泳體系有問題:
①凝膠中緩沖液和電泳緩沖液濃度相差太大;
②凝膠沒有凝固好;
③瓊脂糖質(zhì)量差。
(9)若為PCR試劑盒則可能:
①由于運(yùn)輸儲存不當(dāng)引起試劑盒失效;
②試劑盒本身質(zhì)量有問題,如引物選擇、循環(huán)參數(shù)等選擇不當(dāng)。
(10)降解的陳舊模板擴(kuò)增也易產(chǎn)生涂布。
2、. 擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)多條帶(雜帶)
(1)引物用量偏大,引物的特異性不高。應(yīng)調(diào)換引物或降低引物的使用量。
(2)循環(huán)的次數(shù)過多。適當(dāng)增加模板的量,減少循環(huán)次數(shù)。
(3)酶的用量偏高或酶的質(zhì)量不好,應(yīng)降低酶量或調(diào)換另一來源的酶。
(4)退火溫度偏低,退火及延伸時(shí)間偏長。應(yīng)提高退火溫度,減少變性與延伸時(shí)間,也可采用二種溫度的PCR擴(kuò)增。以2度為梯度設(shè)計(jì)梯度PCR反應(yīng)優(yōu)化退火溫度。
(5)樣品處理不當(dāng)。
(6)Mg2+濃度偏高,因適當(dāng)調(diào)整Mg2+使用濃度。
(7)若為PCR試劑盒,也可能時(shí)試劑盒本身質(zhì)量有問題。
(8)復(fù)制提前終止。使用非熱啟動(dòng)的聚合酶時(shí)常有發(fā)生。冰上準(zhǔn)備反應(yīng)體系或采用熱啟動(dòng)聚合酶。
(9)反應(yīng)緩沖液未完全融化或未充分混勻。確保反應(yīng)緩沖液融化完全并徹底混勻。
(10)引物特異性差。利用BLAST檢查引物特異性或重新設(shè)計(jì)引物。
(11)引物量過多。減少反應(yīng)體系中引物的用量。
(12)模板量過多。質(zhì)粒DNA的用量應(yīng)<50ng,而基因組DNA則應(yīng)<200ng。
(13)外源DNA污染。確保操作的潔凈。
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